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Automatisierte Segmentierung, Verfolgung und hierarchische Merkmalsextraktion von Organellen in 2D/3D Lebendzell-Mikroskopie


Kernkonzepte
Nellie ist eine automatisierte und unvoreingenommene Pipeline zur Segmentierung, Verfolgung und Merkmalsextraktion verschiedener intrazellulärer Strukturen, die sich an Bilddaten anpasst und eine robuste hierarchische Analyse von Organellen ermöglicht.
Zusammenfassung

Nellie ist eine neuartige Bildanalysepipeline, die entwickelt wurde, um die Herausforderungen bei der Analyse dynamischer Organellen zu bewältigen. Die Pipeline umfasst mehrere Schlüsselkomponenten:

  1. Strukturkontrastverbesserung: Nellie verwendet mehrere skalenabhängige Filteralgorithmen, um den strukturellen Kontrast von Organellen auf verschiedenen intrazellulären Ebenen zu verbessern, was eine robuste hierarchische Segmentierung von Subkompartimenten ermöglicht.

  2. Hierarchische Segmentierung: Nellie führt eine instanzbasierte Segmentierung durch, um Objekte durch verbundene Pixel zu trennen, und verwendet dann eine Skelettierung, um Verzweigungspunkte innerhalb der Komponenten zu identifizieren, um das Organellennetzwerk in einzelne Äste zu unterteilen.

  3. Bewegungserfassung: Nellie generiert automatisch Bewegungserfassungsmarker innerhalb der Organellen, die dann über ein adaptives Musterabgleichsschema zwischen benachbarten Frames verfolgt werden. Diese Marker dienen als Wegweiser für eine neuartige zeitliche Interpolationsalgorithmus, der eine subvoxel-genaue Verfolgung ermöglicht.

  4. Merkmalsextraktion: Nellie extrahiert eine Vielzahl von Standard- und erweiterten Quantifizierungstechniken, um ein hierarchisches Pool an beschreibenden räumlichen und zeitlichen Merkmalen auf mehreren Ebenen zu erhalten, die für eine tiefgehende und anpassbare Analyse verwendet werden können.

Zwei Fallstudien zeigen die Leistungsfähigkeit von Nellie: Zum einen kann Nellie verwendet werden, um mehrere Organelltypen aus einem einzelnen Fluoreszenzkanal zu entmischen, indem Merkmale aus der Morphologie und Motilität extrahiert und für die Klassifizierung verwendet werden. Zum anderen kann Nellie verwendet werden, um Graphen-basierte Darstellungen von Mitochondrien zu erstellen, die dann in einem unüberwachten Graphen-Autoencoder-Modell trainiert werden können, um subtile Veränderungen in Mitochondriendynamiken nach Behandlung mit Ionomycin zu quantifizieren.

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Statistiken
Die Länge der Mitochondrienäste ist im Durchschnitt höher als die der Golgi-Apparate. Die Solidität der Golgi-Apparate ist im Durchschnitt höher als die der Mitochondrien. Die lineare Geschwindigkeit der Mitochondrien-Pivot-Punkte ist im Durchschnitt höher als die der Golgi-Apparate. Die Richtungsänderungsrate der Mitochondrien in Bezug auf den Fluoreszenz-Schwerpunkt ist im Durchschnitt höher als die der Golgi-Apparate.
Zitate
"Nellie ist eine neuartige Bildanalysepipeline, die entwickelt wurde, um die Herausforderungen bei der Analyse dynamischer Organellen zu bewältigen." "Nellie extrahiert eine Vielzahl von Standard- und erweiterten Quantifizierungstechniken, um ein hierarchisches Pool an beschreibenden räumlichen und zeitlichen Merkmalen auf mehreren Ebenen zu erhalten, die für eine tiefgehende und anpassbare Analyse verwendet werden können." "Zwei Fallstudien zeigen die Leistungsfähigkeit von Nellie: Zum einen kann Nellie verwendet werden, um mehrere Organelltypen aus einem einzelnen Fluoreszenzkanal zu entmischen, zum anderen kann Nellie verwendet werden, um Graphen-basierte Darstellungen von Mitochondrien zu erstellen, die dann in einem unüberwachten Graphen-Autoencoder-Modell trainiert werden können."

Wichtige Erkenntnisse aus

by Austin E. Y.... um arxiv.org 03-21-2024

https://arxiv.org/pdf/2403.13214.pdf
Nellie

Tiefere Fragen

Wie könnte Nellie verwendet werden, um die Auswirkungen verschiedener Behandlungen oder Mutationen auf die Organisation und Dynamik von Organellen in Echtzeit zu quantifizieren?

Nellie könnte verwendet werden, um die Auswirkungen von Behandlungen oder Mutationen auf die Organisation und Dynamik von Organellen in Echtzeit zu quantifizieren, indem es eine detaillierte Analyse der intrazellulären Strukturen ermöglicht. Durch die automatisierte Segmentierung, Verfolgung und hierarchische Merkmalsextraktion von Organellen in 2D/3D-Live-Zellmikroskopiebildern kann Nellie Veränderungen in der Morphologie, Bewegung und Interaktionen von Organellen erfassen. Dies könnte es Forschern ermöglichen, die Reaktionen von Organellen auf verschiedene Behandlungen oder genetische Mutationen zu verfolgen und zu quantifizieren. Durch die Extraktion einer Vielzahl von Merkmalen auf verschiedenen hierarchischen Ebenen können subzelluläre Veränderungen genau erfasst und analysiert werden. Darüber hinaus ermöglicht die Verwendung von Nellie die Erstellung von Graphen zur Darstellung von Organellenetzwerken und die Verwendung von Graphenautoencodern zur Untersuchung von Veränderungen in den latenten Raumdarstellungen der Organellen.

Welche Herausforderungen müssen überwunden werden, um Nellie auf andere subzelluläre Strukturen wie den Zellkern oder das Zytoskelett anzuwenden?

Die Anwendung von Nellie auf andere subzelluläre Strukturen wie den Zellkern oder das Zytoskelett könnte auf einige Herausforderungen stoßen, die überwunden werden müssen. Zunächst müssen die Merkmale und Parameter von Nellie an die spezifischen Eigenschaften dieser Strukturen angepasst werden. Der Zellkern und das Zytoskelett haben unterschiedliche Formen, Größen und Bewegungsmuster im Vergleich zu Organellen wie Mitochondrien oder Golgi-Apparat. Daher müssen die Segmentierungs- und Tracking-Algorithmen von Nellie möglicherweise neu konfiguriert werden, um diese Strukturen genau zu erfassen. Eine weitere Herausforderung besteht in der Anpassung der Bildverarbeitungstechniken von Nellie an die spezifischen Eigenschaften des Zellkerns und des Zytoskeletts. Der Zellkern hat eine komplexe Struktur mit einer Membran und verschiedenen Untereinheiten wie Nukleolen, während das Zytoskelett aus verschiedenen Proteinfilamenten besteht. Die Anpassung der Filter- und Segmentierungsmethoden von Nellie an diese Strukturen erfordert eine gründliche Analyse und Optimierung. Darüber hinaus müssen mögliche Artefakte oder Störungen, die bei der Bildgebung dieser Strukturen auftreten können, berücksichtigt werden. Die hohe Dichte von DNA im Zellkern oder die dynamische Natur des Zytoskeletts können zu Herausforderungen bei der Bildgebung und Analyse führen. Daher ist es wichtig, dass Nellie robust genug ist, um mit solchen Komplexitäten umzugehen und genaue Ergebnisse zu liefern.

Wie könnte Nellie mit anderen bildgebenden Modalitäten wie Elektronenmikroskopie oder Superauflösungsmikroskopie kombiniert werden, um ein umfassenderes Verständnis der intrazellulären Architektur zu erlangen?

Die Kombination von Nellie mit anderen bildgebenden Modalitäten wie Elektronenmikroskopie oder Superauflösungsmikroskopie könnte zu einem umfassenderen Verständnis der intrazellulären Architektur führen, indem sie verschiedene Ebenen der Zellstruktur und -organisation erfassen. Elektronenmikroskopie bietet eine hohe räumliche Auflösung und die Fähigkeit, subzelluläre Strukturen auf der Nanometerskala zu visualisieren. Durch die Integration von Nellie mit Elektronenmikroskopiebildern können detaillierte 3D-Rekonstruktionen von Organellen erstellt und ihre Bewegungen und Interaktionen in Echtzeit verfolgt werden. Superauflösungsmikroskopie ermöglicht die Visualisierung von subzellulären Strukturen mit einer Auflösung, die über die Beugungsgrenze des Lichts hinausgeht. Durch die Kombination von Nellie mit Superauflösungsmikroskopie können feinste Details von Organellen und deren Veränderungen unter verschiedenen Bedingungen erfasst werden. Die Merkmalsextraktion und Analysealgorithmen von Nellie können genutzt werden, um komplexe Daten aus Superauflösungsbildern zu verarbeiten und umfassende Einblicke in die intrazelluläre Architektur zu gewinnen. Durch die Integration von Nellie mit verschiedenen bildgebenden Modalitäten können Forscher ein ganzheitliches Verständnis der Zellstruktur und -organisation erlangen, das es ermöglicht, subzelluläre Prozesse in Echtzeit zu verfolgen und zu quantifizieren.
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